Comment savoir si le cheptel de remplacement est protégé contre le SDRP ?

La réponse n’est pas facile, les résultats des tests ELISA et PCR ne sont pas concluants à 100%. Vous devez donc renforcer la sécurité grâce à certaines pratiques de conduite décrites ici.

Quelques années ont passé depuis que le SDRP est arrivé dans nos élevages. Pendant tout ce temps, nous avons essayé différentes stratégies pour parvenir à son contrôle, en arrivant à la conclusion que cela ne se faisait pas exclusivement avec l'utilisation de vaccins, mais qu'il est nécessaire que la conduite appliquée ne perpétue pas le virus dans aucune des zones de l'élevage, en empêchant sa réintroduction chez les restantes, générant ainsi des problèmes de reproduction, ainsi que la production de porcelets virémiques qui, plus tard, seront responsables de problèmes dans les phases de croissance. L’introduction des truies de remplacement est l’un des domaines qui a retenu le plus l’attention, du fait de l’importance de maintenir cette stabilité de la gestation.

Lorsque le remplacement provient d'une origine externe, l'introduction d'animaux négatifs en SDRP garantit qu'une nouvelle souche du virus susceptible de rompre la stabilité obtenue ne sera pas introduite par cette voie, mais elle pose en même temps le problème de réussir sa bonne adaptation. Lorsque le remplacement provient de l'élevage lui-même et qu'il est stable, le risque est que, avec le temps, il devienne négatif, ce qui augmenterait le risque de retour à l'instabilité. La solution à ces problèmes consiste à concevoir et à mettre en œuvre un programme d’adaptation qui, soit par contact avec le virus qui circule dans l’élevage, soit par l’utilisation de vaccins, soit par la combinaison des deux, permet aux cochettes de développer une immunité contre la maladie et de dépasser leur état excréteur après le contact avec le virus. Ainsi, les introduire dans les zones de gestation ou de reproduction de l'élevage ne posera aucun risque pour le maintien de la stabilité. Mais, lorsque ces stratégies sont appliquées, les doutes qui subsistent sont toujours les mêmes: le remplacement introduit est-il vraiment protégé ? Est-on sûr qu'elles n'élimineront plus le virus quand seront en contact avec le reste des truies ?

Les techniques disponibles sur le terrain qui indiquent la production d'anticorps (techniques ELISA) ne nous permettent pas d'établir une corrélation entre les résultats obtenus et le niveau de protection (López, 2007); elles indiquent uniquement qu'il y a eu contact avec le virus. Au niveau expérimental, il existe d'autres techniques nous permettant de savoir si l'immunité cellulaire a été développée et d'autres nous permettant de savoir si les animaux ont ou non la capacité de séroneutraliser le virus, toutes deux davantage en rapport avec une protection réelle. Mais malheureusement, ces techniques sont coûteuses et complexes et elles ne sont donc pas couramment utilisées. Les techniques ELISA posent un problème supplémentaire car, compte tenu de la sensibilité de la technique, nous pouvons trouver un pourcentage (faible) d’animaux qui, même après avoir été en contact avec le virus, donne un résultat négatif (faux négatifs). Par conséquent, dans la pratique, nous effectuerons une sérologie en utilisant un test ELISA sur un pourcentage significatif de cachettes. Ce que nous voulons vérifier, c’est que le groupe est positif. Il sera considéré comme positif, même avec quelques résultats négatifs (tant qu'il se situe dans les limites de sensibilité du test effectué).

S'assurer que les truies n'éliminent plus le virus semble plus facile, étant donné qu'aujourd'hui nous disposons de techniques de PCR permettant de détecter de très petites quantités de particules virales. Cependant, dans le cas d'animaux infectés par le virus du SDRP, la virémie ou la présence du virus dans le sang ne durera pas plus de 4-6 semaines dans la plupart des cas, mais nous savons que les animaux sans virus dans le sang peuvent être porteurs au niveau des amygdales pendant une période beaucoup plus longue (Horter et al. 2001). Pour savoir si le virus est dans les amygdales, une biopsie de celles-ci doit être effectuée, ce qui n’est pas pratique. C’est la raison pour laquelle, malgré ses limites, nous continuons d’utiliser la PCR comme technique qui nous donne une approximation de l’état de porteur. Ces PCR peuvent être effectuées à partir d’échantillons de sang ou de salive et, toujours, sur un pourcentage significatif de la population que nous allons introduire.

En pratique, ce que nous voulons, c’est avoir un cheptel de remplacement positif en ELISA et négatif en PCR avant de le mettre en contact avec le reste des truies. Mais, connaissant les limites des techniques, il est nécessaire d'essayer que la conduite menée apporte une sécurité supplémentaire. Ainsi, par exemple, des adaptations suffisamment longues (environ 12 semaines) sont recommandées pour assurer le contact et la cessation de l'excrétion, ainsi qu'une conduite distincte des cachettes inséminées, au moins pendant le premier tiers de la grossesse, dans le but de: tamponner la présence éventuelle d'une pochette excrétrice r à l'intérieur du groupe.