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Surveillance en maternité
Pour déterminer si un élevage est stable en SDRP, il faut confirmer qu'aucun porcelet virémique n'est né. La transmission transplacentaire du SDRP est très efficace, en particulier à la fin de la gestation, et par conséquent, en cas de virémie chez les reproducteurs, une infection du fœtus in utero se produira très probablement.
Pour cela, nous devons surveiller la maternité. Idéalement, les porcelets devraient être testés à la naissance, mais en raison de la difficulté à échantillonner ces animaux, les animaux sont souvent prélevés peu avant le sevrage. Si les résultats sont négatifs, ils confirment l'absence de circulation virale chez les reproducteurs. S'ils sont positifs, il faut prélever des échantillons à la naissance pour déterminer si les porcelets sont nés infectés ou s'ils ont été infectés par contamination croisée pendant la lactation.
L'échantillon de référence pour déterminer la présence du virus est le sérum. Dans un premier temps, des échantillons de sang doivent être prélevés sur un total de 30 porcelets, ce qui nous permettrait de détecter une prévalence de 10% avec un niveau de confiance de 95% dans des échantillons aléatoires. Lors de l'échantillonnage d'animaux présentant des signes de maladie, on estime que la sensibilité est plus élevée. Dans des situations de circulation virale très faible, comme les étapes finales d'un programme de stabilisation ou des élevages jugéss cliniquement stables, cette intensité d'échantillonnage peut ne pas être suffisante et il est recommandé d'augmenter la taille de l'échantillon à 60, ce qui permet de détecter des prévalences de 5%. ou plus. En raison du faible niveau de circulation virale, un échantillonnage systématique et en série doit être effectué pendant de longues périodes, car il est possible qu'après plusieurs mois de résultats négatifs, nous puissions trouver un échantillon positif. Les porcelets d'au moins un cycle de reproduction complet doivent être surveillés une fois que nous commençons à trouver des résultats négatifs.
Compte tenu de la difficulté de prélever des échantillons de sang sur de jeunes animaux, de l'impact sur leur bien-être et de la grande taille de l'échantillon nécessaire pour détecter de faibles prévalences, des systèmes d'échantillonnage alternatifs ont été développés. Une option est l'utilisation de fluides de traitement, correspondant à l'exsudat des testicules et des queues. Comme cet exsudat est principalement composé de plasma et de sang, le virus s'y trouve généralement lorsque les porcelets sont virémiques, ce qui en fait une bonne option pour augmenter la taille de l'échantillon, en maintenant une bonne sensibilité par rapport à l'analyse des échantillons de sérum. . Il est à noter que l'utilisation de fluides de traitement n'est valable que dans les élevages où la castration systématique est pratiquée. Dans les fluides provenant uniquement de coupes de queues, la sensibilité est beaucoup plus faible et insuffisante pour pouvoir déterminer de manière fiable le statut de l'élevage (Vilalta et al., 2018).
L'obtention de sang à partir de cordons ombilicaux s'est avérée être une option viable pour la détection du SDRPv chez les porcelets nouveau-nés (Martin-Valls et al., 2018). Bien que l'échantillon soit plus facile à obtenir, il doit être prélevé à peu près au moment de la naissance et il faut garder à l'esprit qu'il est possible de détecter une contamination environnementale. Cependant, c'est une alternative fiable qui permet de surveiller facilement la maternité et qui est préférable aux fluides de traitement de queue seulement.
Les liquides oraux (salive) ont également été identifiés comme un échantillon valide. Le problème dans ce cas est que les porcelets allaitants ne sont généralement pas attirés par les cordes, donc le temps d'échantillonnage est long et la représentativité de la portée faible, ce qui en fait une option non viable. Pour tenter d'améliorer l'utilité de la technique, nous avons choisi d'inclure la mère dans les fluides dits familiaux, puisque l'exemple de la mère encourage les porcelets à mordre la corde et augmente la sensibilité de la technique. Cependant, il s'agit d'un système à l'étude et il n'est pas considéré comme la meilleure option. En outre, la possibilité de prélever des échantillons à la surface de la mamelle de la truie à l'aide de lingettes imprégnées de liquide a été décrite avec le raisonnement selon lequel, si les porcelets sont infectés, ils excréteront des virus dans les liquides oraux et contamineront la mamelle. Bien qu'il y ait peu d'expériences et qu'il soit tôt pour évaluer la valeur de ce système, les résultats sont encourageants, tout comme ceux obtenus avec l'échantillonnage des surfaces en salle de lactation. Dans ce cas, cependant, tout comme nous l'avons indiqué pour les cordons ombilicaux, il est possible d'obtenir des échantillons positifs à partir de portées négatives, ce qui indique la détection d'ARN viral de contamination environnemental et l'interprétation des résultats doit donc être prudente (Vilalta et al, 2019).
Enfin, la possibilité d'utiliser la collecte d'échantillons agrégés à partir de parties de carcasses, en particulier les langues, est à l'étude pour déterminer la présence ou l'absence du virus chez les animaux mort-nés (Baliellas, 2020).
Suivi des reproductrices
Un autre point clé est l'analyse des truies de remplacement. Cela devrait inclure un échantillon à l'entrée et un autre à la sortie de la quarantaine en utilisant l'ELISA et la RT-PCR pour confirmer leur état sanitaire, surveiller l'efficacité de l'adaptation et connaître le moment de l'infection, si elle se produit. Des outils tels que le séquençage doivent être utilisés pour confirmer l'identité des virus trouvés pendant la période d'adaptation (c.-à-d. vaccinal ou souche de terrain). S'il ne suffit pas de confirmer que les truies ne présentent pas de risque pour l'élevage, il faut vérifier qu'au moins elles ne sont pas virémiques lorsqu'elles entrent dans les installations de gestation.
En revanche, le suivi des reproductrices est extrêmement difficile. La sérologie est de peu de valeur car il n'y a pas de vaccins délétés sur le marché, les valeurs S / P sont très variables entre les individus et dépendent à leur tour de la souche à l'origine de l'infection (Kim et al., 2007), et les animaux restent séropositifs pendant plusieurs mois. De plus, il n'y a souvent pas de réponse secondaire après une réinfection, et lorsqu'elle se produit, elle est très rapide, de sorte que l'échantillonnage apparié est souvent peu utile pour déterminer la recirculation du virus. De même, le suivi par RT-PCR n'est pas pratique, car le nombre d'animaux virémiques à un moment donné est très faible et la virémie chez les animaux adultes et avec une immunité antérieure est très courte. Tout cela signifie que, dans la pratique, la capacité de détection est très faible et n'en vaut pas la peine. Sur la base de tout ce qui précède, nous pouvons conclure que la surveillance des truies en production n'est utile que dans les élevages négatifs et pour le diagnostic des foyers épidémiques de la maladie.
En revanche, le suivi des animaux en croissance est assez facile et presque tous les échantillons et techniques peuvent être utilisés. La seule considération serait d'utiliser une taille d'échantillon et un système d'échantillonnage permettant d'obtenir une bonne représentativité de la population étudiée en fonction du niveau de prévalence attendu.
